ÍNDICE

domingo, 10 de mayo de 2015

Práctica: Determinación del fenotipo y genotipo del sistema Rh.

Fecha: 07/05/2015.


Información sobre la práctica:


El genotipo es la dotación genética en el cromosoma y el fenotipo es la manifestación de ese genotipo.


En el caso de los sistemas de grupo sanguíneo el fenotipo se puede considerar como la suma total de antígenos detectados en elos hematíes mediante la utilización de antisueros específicos.


Algunas veces , el fenotipo es idéntico al genotipo. En el sistema Rh, esto solo ocurre en contadas ocasiones.


Debido a que no existe el antígeno d, ni el anticuerpo anti-d, es imposible determinar si el antígeno D es homozigoto o heterozigoto mediante su detección en los hematíes.Por esto, solo podemos determinar el genotipo  a base de estadística, es decir, para un fenotipo buscar el genotipo más probable.


La necesidad de determinar el genotipo se debe a que existen casos de madres inmunizadas frente a D, y conviene conocer si el padre es o no homozigoto para D, antes de producirse un segundo embarazo. Un padre que es homozigoto D transmitirá el gen D a todos sus hijos, mientras que uno heterozigoto lo transmitirá con un 50 % de ptrobabilidades.


Para determinar el fenotipo tenemos que enfrentar los hematíes problema con antisueros anti-D, anti-C, anti-E, anti-c y anti-e.




La c (minúscula) lleva una raya encima para diferenciarla de la C (mayúscula).















Fundamento:


Para investigar el genotipo del sitema Rh enfrentamos hematíes problema  a distintos antisueros dirigidos contra los antígenos que componen el sistema Rh.


La existencia o no de esos antígenos en la superficie de los hematíes se detecta por reacción de aglutinación. Los resultados obtenidos se trasladan a una tabla donde se pueden ver los posibles genotipos que le corresponden.



Material necesario:


-Papel de filtro.

-Gradilla.

-Pipetas Pasteur.

-Tubos de hemólisis.

-Centrífuga.

-Rotulador de vidrio.

-Vaso de precipitado.

-Visualizador.

-Papel Parafilm.



Reactivos:


-Suero anti-D.















-Suero anti-E.















-Suero anti-C.
















-Suero anti-e.















-Suero anti-c.















-Solución salina al 0,9 %.













Muestra:


-Suspensión de hematíes al 5 % lavados con suero fisiológico al 0,9% 3 veces.



Objetivos propuestos:


-Saber qué antisueros se utilizan en esta técnica.


-Decir por qué no existe suero anti-d.


-Saber qué expresan los cinco resultados obtenidos.


-Si la sangre es Rh +, decir si puede determinarse exactamente su genotipo con respecto al sistema Rh.


-Si los resultados obtenidos son : D-,C-, E+, c+ y e-, decir cuál es el genotipo posible de esta sangre.



Desarrollo de la práctica:


1º. Realizamos 3 lavados de hematíes y preparamos su suspensión al 5 % (Se realiza de la misma forma que en prácticas anteriores).


2º. Rotulamos 5 tubos de hemólisis con las letras: D, C, E c y e.


3º. En cada tubo tenemos que añadir 1 gota de antisuero correspondiente y 1 gota de suspensión de hematíes al 5 %. Mezclamos suavemente.












4º. Centrifugamos todos los tubos a 1.000 r.p.m durante 1 minuto (Realizamos otro tubo para compensar en la centrífuga).



Lectura de resultados:


Golpeamos suavemente con el dedo en la parte inferior del tubo y si hay aglutinación el resultado es positivo, si por el contrario, se produce una suspensión homogénea rojiza , hay ausencia de aglutinación, por lo que el resultado es negativo.


Interpretación clínica de los resultados:


Un resultado positivo indica la presencia de antígeno del sistema Rh buscado en ese tubo. El resultado negativo indica que no hay presencia.


Los 5 resultados obtenidos expresan el fenotipo de la sangre problema y se comparan con los resultados de la tabla de fenotipos y genotipos del sistema Rh.


Una vez que hemos encontrado la hilera coincidente, se mira en ella el posible o posibles genotipos que corresponden.


Esto es así porque si la sangre problema es Rh negativa (D-), se puede determinar su único genotipo posible con respecto al sistema Rh. Sin embargo, si la sangre es Rh positiva (D+), exsiten varios genotipos posibles que dan lugar al fenotipo anteriormente detectado.



Resultados obtenidos:


Siguiente la hilera que correspondía, obtuvimos los siguientes genotipos posibles: DcE/dca     DcE/Dce     Dce/dcE



Resolución de los objetivos propuestos:


-En esta técnica se utilizan los antisueros: anti-D, anti-E, anti-C, anti-e, anti-c.


-No existe suero anti-d porque no existe el antígeno d ni el anticuerpo anti-d.



-Los 5 resultados obtenidos expresan la existencia o no de esos antígenos. A partir de esos resultados podemos observar los genotipos posibles. 


-Si la sangre es Rh + el genotipo exacto con respecto al sistema Rh no se puede determinar porque hay varias opciones posibles.


- Si obtenemos los siguientes resultados: D-, C-, E+, c+ y e-, el genotipo posible de esta sangre es dcE/dcE.








sábado, 9 de mayo de 2015

Práctica: Determinación del grupo Rh en tubo.

Fecha: 05/05/2015.


Introducción:


En esta práctica vamos a realizar la determinación del grupo Rh pero en tubo. 


Se realiza igual que en porta, pero en este caso utilizamos también suero fisiológico al 0,9 %.




















Fundamento: 


Al igual que con la técnica del porta, intentamos poner de manifiesto la presencia del antígeno D en la superficie de los hematíes mediante se enfrentamiento a un suero anti-D.


Material necesario:


-Papel de filtro.

-Tubos de centrífuga.

-Tubos de hemólisis.

-Gradilla.

-Papel Parafilm.

-Centrífuga.

-Baño de agua.

-Rotulador de vidrio.

-Vaso de precipitado.

-Visualizador.


















-Pipetas Pasteur.




Reactivos:


-Suero anti-D.




















-Albúmina bovina al 30 %.

























-Solución salina fisiológica al 0,9 %.


























Muestra:


Para obtener la muestra tenemos que lavar los hematíes 3 veces y realizar una suspensión al 5 %.


1º. En un tubo de centrífuga ponemos 1 ml de sangre con ayuda de una pipeta Pasteur y añadimos aproximadamente la misma cantidad de solución salina al 0,9 %, removemos y centrifugamos a 2.000 r.p.m durante 4 minutos.


2º. Después quitamos el sobrenadante con otra pipeta Pasteur y añadimos la misma cantidad de solución salina al 0,9 %, movemos suavemente y centrifugamos a las mismas revoluciones durante el mismo tiempo. Realizamos este proceso una última vez, en total se deben hacer 3 lavados de hematíes.


Ahora, para realizar la suspensión al 5 %, cogemos con otra pipeta Pasteur 5 gotas del fondo de los hematíes lavados y las depositamos en un tubo de centrífuga con 5 ml de solución salina al 0,9 %.

Por último, agitamos suavemente.
























Objetivos de la práctica:


-Explicar por qué utilizamos el control de albúmina.


-Explicar qué ocurre si no aparece aglutinación el el tubo D.


-Decir qué debemos detectar mediante un Coombs indirecto.


-Decir cómo se prepara la muestra problema.



Procedimiento:


1º. Rotulamos 2 tubos de hemólisis con las letras D y A.



2º. En el tubo D añadimos 1 gota de suero anti-D y en el tubo A ponemos 1 gota de albúmina bovina al 30 %. 



3º. A cada tubo le añadimos 1 gota de la suspensión de hematíes al 5 % que hemos realizado antes. Movemos suavemente.



4º. Centrifugar a 1.000 r.p.m durante 1 minutos o a 3.500 r.p.m durante 30 segundos.


Lectura de resultados:


Con el dedo damos pequeños golpes en la parte inferior del tubo, si se observan grumos rojos  es aglutinación positiva, si por el contrario, golpeamos pero no se forman grumos sino una solución homogénea, no hay aglutinación o es una aglutinación negativa.


El tubo con albúmina es un control negativo, y debe dar siempre ausencia de aglutinación. En caso de no ser así, el resultado de la prueba no es válido.



Interpretación clínica de los resultados:


Si el tubo D presenta aglutinación y el tubo A no, la persona es  Rh positivo.


Si no se produce aglutinación en ninguno, los incubamos a 37 ºC durante 30 minutos en el baños de agua. Después, centrifugamos a 1.000 r.p.m durante 1 minuto y observamos si existe o no aglutinación.



Si persiste la negatividad, comprobamos que la persona no posee un Du (D débil) mediante una prueba de Coombs indirecta.


Si después de todo sigue sin aglutinar, la persona es Rh negativo.


Resultados obtenidos:












En un primer momento no obtuvimos aglutinación en ninguno de los tubos, los incubamos a 37º C en el baño de agua durante 30 minutos y centrifugamos a 1.000 r.p.m durante 1 minuto.


Seguía sin producirse aglutinación pero como no podíamos realizar la prueba de Coombs indirecta, procedimos a indicar que el Rh de esta persona es negativo, debido a que sabíamos desde un principio que su Rh era negativo y por lo tanto, descartamos que tuviera Du (D débil).


Valoración de los resultados:


La sangre analizada es: 

-Rh negativo.


Resolución de los objetivos propuestos:


-Utilizamos el control de albúmina como control negativo. Nunca debe dar presencia de aglutinación, en caso de no ser así, el resultado de la prueba no es válido.


-Si no aparece aglutinación en el tubo D, debemos incubar ambos tubos a 37 ºC en el baño de agua durante 30 minutos. Posteriormente centrifugamos a 1.000 r.p.m durante 1 minutos y observamos si sigue sin aglutinar.

Si sigue pesistiendo la negatividad, tenemos que comprobar que la persona no posee un Du (D débil) mediante una prueba de Coombs indirecta.

Después de todo esto, si sigue sin aglutinar damos como resultado que la persona tiene un Rh negativo.


-Mediante un Coombs indirecto debemos detectar si la persona posee un Du (D débil).



-La muestra problema se prepara como he explicado en el apartado de muestra.



Práctica: Determinación del grupo Rh en porta.

Fecha: 05/05/2015.



Introducción sobre la práctica:


Al igual que en el caso del grupo ABO, el grupo Rh también sse puede determinar en porta o en tubo.


En el caso del porta, debemos mencionar que la aglutinación se favorece con el calor, por lo que es necesario utilizar un visualizador que permita calentar un poco el porta.

















Fundamento:


Esta técnica se basa  en al detección del antígeno D sobre la superficie de los hematíes problema, empleando como reactivo un suero monoclonal humano que contiene anticuerpos anti-D.


En el caso de que los hematíes contengan el antígeno D se producirá aglutinación.


Material necesario:


-Papel de filtro.

-Portas limpios.

-Rotulador de vidrio.

-Palillos.

-Visualizador luminoso.
















-Alcohol para desinfectar.

-Lancetas.

-Gasas.

-Capilares (es lo más conveniente).


Reactivos:


-Suero anti-D.



















-Albúmina bovina al 30 %.



















Muestra:



Nosotros utilizamos sangre capilar fresca.


Objetivos de la práctica:


-Decir qué tipo de muestra empleamos en esta técnica.


-Decir para qué utilizamos el visualizador.


-Explicar qué puede dar lugar a falsas aglutinaciones.


-Mencionar qué ocurre si aglutina la sección A.



Desarrollo de la práctica:


1º. Dividimos el porta en dos secciones con un rotulador de vidrio y marcamos en una con una S (suero) y otra con A (albúmina).



















2º. En la sección S colocamos 2 gotas de suero anti-D, y en la sección A ponemos 2 gotas de albúmina bovina al 30 %.



3º. Ponemos 1 gota de sangre utilizando un capilar en cada una de las secciones y mezclamos con palillos distintos (también se puede añadir primero la sangre y después los reactivos).



4º. Colocamos el porta sobre el visualizador previamente calentado, y lo balanceamos para favorecer la mezcla de sangre y reactivos.






















Lectura de resultados:


Esperamos 2 minutos antes de dar el resultado de la prueba.


-Aglutinación positiva: aparecen grupos rojos. No deben confundirse con pequeños coágulos de fibrina presentes en la muestra.


-Aglutinación negativa: aparece una suspensión homogénena de hematíes.



La mezcla de sangre con albúmina bovina debe dar siempre aglutinación negativa. En caso de no sear así, no podemos informar el resultado de la prueba.



Interpretación clínica de los resultados:


Utilizamos el siguiente cuadro:

















+ = Aglutinación positiva o solo se dice aglutinación.

- = Aglutinación negativa o solo se dice no aglutinación.

¿? = No se puede interpretar.


Para confirmar un Rh negativo es necesario realizar la prueba en tubo.


Resultados obtenidos:





















Se puede observar aglutinación en la sección S y no aglutinación o aglutinación negativa en la sección A, por lo tanto, según la tabla, soy Rh positivo (+).


Resolución de los objetivos propuestos:


-En esta técnica empleamos sangre capilar fresca, pero también se puede utilizar sangre venosa anticoagulada.


-El visualizador se utiliza porque la aglutinación se favorece con el calor y también para observar la presencia de aglutinación o no de forma más clara.


-Puede dar lugar a falsas aglutinaciones pequeños coágulos de fibrina.


-Si la sección A aglutina no se puede interpretar el resultado.



Tabla y gráfica del grupo Rh en nuestra clase:



Rh +
Rh -
18
2

































Bibliografía:


-Libro de Hematología.

domingo, 3 de mayo de 2015

Práctica: Determinación sérica del grupo ABO.

Fecha: 27/04/2015


Información sobre la práctica:


La compatibilidad entre donante y receptor es un paso muy importante en las transfusiones sanguíneas.

Se debe confirmar el resultado de la prueba celular con la determinación sérica del grupo sanguíneo (también se puede realizar con plasma).


Fundamento:


El suero o plasma de un individuo solo debe contener anticuerpos (acs)  frente a los antígenos (ags) que no están presentes en sus propios hematíes. Por ello, al hacer reaccionar este suero con hematíes tipados de cada grupo, solo producirá aglutinación en el caso de ser enfrentado a eritrocitos con ag distinto a los de  sus propios hematíes.

Esta determinación se puede realizar en porta o en tubo, pero se prefiere en tubo porque la centrifugación de los hematíes intensifica la aglutinación.



Material:


-Tubos de hemólisis.

-Pipetas Pasteur.

-Papel de filtro.

-Centrífuga.

-Pipeta graduada de vidrio de 5 ml.

-Rotulador de vidrio.

-Vaso de precipitado.

-Gradilla.

-(Baño de agua).

-Reloj.


Reactivos:

-Suero salino.


-Hematíes tipados del grupo A1,A2, B y 0.











-Hematíes de la sangre problema.


Muestra:


Una opción es suero y la otra opción es plasma.


Objetivos de la práctica:


-Definir los hematíes tipados.


-Decir a qué dilución empleamos los hematíes del paciente.



-Decir qué clase de muestra se emplea en esta técnica.


-Saber qué ocurre cuando el tubo C muestra aglutinación.




Desarrollo de la práctica:


Esta práctica la realizamos de distintas formas, por lo que, voy a ir explicando cada forma de manera individual.


No debemos olvidar que tenemos que hacer un tubo control, lo llamaremos tubo C.


1º. Cuando utilizamos suero calentamos en el baño a 56 ºC durante 10 minutos. 



2º. Rotulamos 5 tubos de hemólisis como: A1, A2, B, 0 y C.


3º . De la sangre problema obtenemos el plasma o suero y lavamos 3 veces los hematíes propios de esa sangre problema ( al centrifugar la sangre problema le quitamos el sobrenadante y  a lo sedimentado le añadimos 3 ml de suero salino y removemos suavemente).


4º. Centrifugamos a 2.000 r.p.m durante 4 min y desechamos el sobrenadante, nos quedamos solo con 2 gotas de hematíes  ( si queremos la solución al 2 % ) o 5 gotas ( si la queremos al 5 %).


5º. En el caso del 2 % también le añadimos 5 ml de suero salino.


6º. Si lo hubieramos hecho al 5 % le añadimos aproximadamente 5 gotas hematíes y aproximadamente 5 ml ( exactamente 4,75 ml ) de suero salino.


7º. Los lavados se realizan 3 veces.


8º. En cada tubo depositamos 2 gotas de suero o plasma problema y 1 gota de suspensión de hematíes que le corresponda a cada tubo. En el tubo C añadimos 1 gota de suspensión de hematíes propios de la sangre problema, ya que nos servirá de control negativo.


9º. Removemos suavemente y centrifugamos a 1.000 r.p.m durante 1 minuto.


10º. Otro intento de esta práctica fue utilizar 4 tipos de sueros , es decir de cada grupo sanguíneo: A1,A2, B y 0.




























11º. Utilizamos 16 tubos en total, es decir, 4 para grupo sanguíneo.


Lectura de resultados:

Golpeamos suavemente el fondo del tubo y si aparecen grumos flotando indica aglutinación. En el caso contrario, se observa un líquido homogéneo.


Interpretación clínica de los resultados:






















Es difícil confirmar el grupo sanguíneo de recién nacidos porque sus acs aún no están bien desarrollados. También el pacientes con agammaglobulinemia, ya que carecen de acs, y en aquellos que poseen otros acs específicos o inespecíficos capaces de reaccionar con los ags del grupo ABO.


Causas de la discrepancia entre la prueba celular y sérica:


-Debido a errores técnicos.

-Debido a problemas con la muestra.


Resolución de los objetivos propuestos:



-Los hematíes tipados son los hematíes que sabemos de qué grupo sanguíneo son.


-Los hematíes del paciente los empleamos a una dilución del 5 %, aunque también se puede realizar al 2 %.


-En esta técnica se emplea o plasma o suero como muestra.


-Cuando el tubo C presenta aglutinación es que hay autoanticuerpos en el suero y el grupo eritrocitario es ininterpretable.


Resultados obtenidos:


Cuando lo realizamos con los 4 sueros, nos salió en el suero 1: grupo A2, en el suero 2 : grupo B , en el suero 3 : grupo A1B y en el suero 4 : grupo B.


Los resultados teóricos son los siguientes: 

Suero 1 : grupo A1.

Suero 2 : grupo 0.

Suero 3 : grupo B.

Suero 4 : grupo A2.


Observaciones de la práctica:


En este caso la interpretación de resultados es distinta, ya que, cuando hay aglutinación es ese el ac presente en el suero.

Ej: Aglutinación en el tubo B, hay anticuerpos Anti-B, por lo que es del grupo sanguíneo A1 (lo de los acs presentes en el suero se pueden ver en la tabla añadida en apartados anteriores).


Bibliografía:


-Libro de Hematología.

viernes, 1 de mayo de 2015

Práctica: Preparación de suspensión de hematíes tipados.

Fecha: 24/04/2015



Fundamento de la práctica:

Realizamos 3 lavados a los hematíes tipados para obtener hematíes de cada tipo, es decir, tipados, a una concentración del 2 %.















Materiales:

-Gradilla.

-Tubos de centrífuga o de vidrio normales.

- Centrífuga.

-Vaso de precipitado.

-Papel de filtro.

-Pipeta graduada de 5 ml de vidrio.

-Pipetas Pasteur de plástico de 3 ml.

-Frascos de vidrio ámbar.

-Rotulador de vidrio.

-Probeta de 100 ml.

-Reloj.


Reactivos:

-Solución salina.


Muestras utilizadas:

-Sangre anticoagulada del grupo A1, A2 , B y 0.


Objetivos de la práctica:

Obtener hematíes lavados y tipados a una concentración del 2 %.


Desarrollo de la práctica:

1º. Tomamos 1 ml de sangre A1 y la depositamos en un tubo de centrífuga rotulado como A1, tenemos que hacer lo mismo con el grupo A2 , B y 0 en sus respectivos tubos rotulados.


2º. A continuación, completamos  cada tubo con 3 ml de solución salina con ayuda de una pipeta Pasteur y removemos suavemente.















3º . Metemos los tubos en la centrífuga a 2.000 r.p.m durante 4 minutos.


4º . Quitar el sobrenadante con ayuda de otra pipeta Pasteur y repetir 2 veces más a partir del 2º punto.


5º. (Volvemos a añadir 3 ml de suero salino, removemos y centrífugamos, quitamos el sobrenadante y una última vez añadimos 3 ml de suero salino, removemos suavemente y centrifugamos).


6º . Del último lavado quitamos el sobrenadante y con otra pipeta cogemos 2 gotas de los hematíes depositados al fondo y las depositamos en otro tubo rotulado (este paso es para preparar los hematíes a una concentración del 2 %).


7º . También añadimos a ese tubo 5 ml de solución salina con una pipeta graduada de 5 ml de vidrio y movemos suavemente.


8º . Recordemos que esto debe hacerse con todos los tubos del principio, el A1, A2 , B y 0.


9º. En nuestro caso quisimos guardar más cantidad de hematíes tipados al 2 %, por lo que en vez de utilizar 2 gotas de hematíes del fondo y 5 ml de solución salina, utilizamos 16 gotas de hematíes del fondo y 40 ml de solución salina.


Anotaciones:

Al hacer lavados de hematíes siempre es necesario realizarlos 3 veces para que sean más efectivos los lavados.


En las prácticas de grupos sanguíneos no es necesario realizar 3 lavados, con uno es suficiente.


También es importante añadir que los tubos de hemólisis son útiles para las pruebas en las que se tiene que observar o no aglutinación, pero en los lavados es más conveniente utilizar tubos de centrífuga.









martes, 28 de abril de 2015

Práctica: Determinación celular en tubo.

Fecha: 22/04/2015


Fundamento de la práctica:

Este es otro método para determinar el grupo sanguíneo.
Los hematíes problema contienen las sustancias antigénicas del sistema ABO y se enfrentan a sueron conocidos que poseen anticuerpos frente a esos antígenos.


El resultado final es la presencia o no de aglutinación en los hematíes que han reaccionado.

















Materiales:


-Tubos de hemólisis o de centrífuga.

-Rotulador de vidrio.

-Pipetas Pasteur de plástico o de vidrio.

-Centrífuga.

-Pipeta graduada de vidrio de 5 ml.

-Papel de filtro.

-Prepipeta.

-Luz para observar mejor la presencia o no de aglutinación.















-Vaso de precipitado.

-Gradillas.


Reactivos:



Suero anti-A
















Suero anti-B











Suero anti-AB











-Solución de suero salino.



Muestra:

-Sangre anticoagulada con EDTA.


Objetivos de la práctica:

-Decir el tipo de técnica inmunológica que se emplea en este análisis.


-Decir la concentración a la que se prepara la suspensión de hematíes problema.


-Saber cómo se ve una aglutinación positiva.


-Saber a qué se debe el fenómeno de Rouleaux.


-Explicar cómo se pueden evitar los falsos positivos.


Desarrollo de la práctica:

1º. Primero realizamos un lavado de hematíes, para ello,  rotulamos un tubo de centrífuga y añadimos 1 ml de muestra de sangre y 2,5 ml de solución salina,después agitamos suavemente evitando producir hemólisis (realizamos 3 lavados).


2º . Centrifugamos 4 minutos a 2.000 r.p.m y quitamos el sobrenadante con ayuda de una pipeta Pasteur.

















3º . Con otra pipeta cogemos 2 gotas de los hematíes del fondo del tubo y las depositamos en otro tubo.


4º . Después le añadimos 5 ml de solución salina con ayuda de una pipeta graduada de 5 ml. Removemos y ya está la solución de hematíes al 2 %.


















5º . Rotulamos 3 tubos de hemólisis: A,B y AB.


6º. A cada tubo le añadimos 1 gota de la solución de hematíes al 2 %. También añadimos 2 gotas de suero anti-A en el tubo A, 2 gotas de suero anti-B en el tubo B y 2 gotas de suero anti-AB en el tubo AB.


7º . Centrifugamos los tubos enfrentándolos en la centrífuga durante 1 min a 1.000 r.p.m o 30 segundos a 3.400 r.p.m (como nos sobraba 1, hemos realizado otro tubo A para compensar).



En el tubo A podemos apreciar aglutinación.
















En el tubo B no podemos apreciar aglutinación.
















En el tubo AB podemos observar aglutinación.

















Lectura de resultados:


Después de centrifugar, golpeamos suavemente el fondo de cada tubo par adesprender el sedimento y observar si hay presencia o ausencia de aglutinación.


En nuestro caso, se produjo aglutinación en el tubo A y el AB, por lo tanto, la muestra es del grupo sanguíneo A ( el tubo AB solo se realiza para comprobar).


Interpretación clínica de los resultados obtenidos:

Se realiza igual que la técnica del porta.


Pueden dar falsos negativos y también falsos positivos.


Los falsos negativos pueden deberse a: restos de detergente o sustancias extrañas en los tubos.


Los falsos positivos pueden deberse a: aglutinaicón no específica o al fenómeno de Rouleaux.


Resultados obtenidos:

La muestra de sangre es del grupo:

-A


Resolución de los objetivos propuestos:

-En este análisis se emplea la técnica en tubo.


-La suspensión de hamtíes problema se prepara entre el 2 y el 4 %.


-La aglutinación positiva es cuando se observa un botón de hematíes que permanecen unidos una vez desprendido el sedimento.


-El fenómeno de Rouleaux se debe a sustancias como: el fibrinógeno, las gammaglobulinas, el dextrano y la polivinilpirrolidona.


-Los falsos positivos se pueden evitar lavando previamente los hematíes problema.