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viernes, 16 de enero de 2015

Práctica: Recuento de leucocitos (WBC).


Fecha: 12/01/2015.

Introducción:

El recuento de leucocitos (WBC) consiste en determinar el número de leucocitos o glóbulos blancos presentes en un volumen de sangre determinado.


Material necesario:

El material es el mismo que en recuento de eritrocitos, pero la pipeta diluidora de Thoma tiene que ser para glóbulos blancos.

-Papel de filtro.

-Cámara de recuento de Neubauer mejorado.
















-Pipeta diluidora de Thoma, para glóbulos blancos o también se puede realizar con una micropipeta.

















-Tubo de goma con boquilla, adaptable a la pipeta diluidora de Thoma para glóbulos bláncos.














-Un cubreobjetos.

-Un microscopio óptico.

-Frasco lavador.

-Gasas.

-Prepipeta.

-Micropipeta.

-Tubos de ensayo.

-Gradilla.

-Puntas de micropipeta.

-Vaso de precipitado.


Reactivos empleados:

-Líquido de dilución: el más utilizado es el de Turck (Ya se encuentra preparado en nuestro laboratorio).





























Se compone de:

  • 2 ml de ácido acético glacial (produce la lisis de los eritrocitos sin alterar a los leucocitos).
  • 1 ml de solución acuosa de violeta de genciana al 1 % (tiñe el núcleo de los leucocitos. El violeta de genciana puede ser sustituido por azul de metileno).
  •  100 ml de agua destilada.

Muestra:

Sangre capilar fresca o sangre venosa anticoagulada con EDTA.


Utilización de la micropipeta en lugar de la pipeta de Thoma:

Siempre la proporción va a ser 1/10 para leucocitos en el caso de que lleguemos a la señal de 1 y para la señal de 0,5 la proporción será 1/20. (Normalmente la proporción es 1/10)

Por ejemplo, queremos una dilución de 1ml:

1ml = 1.000 microlitros.

1.000/10 = 100 microlitros de sangre.

1.000 microlitros totales - 100 microlitros de sangre = 900 microlitros de líquido diluyente.

Lo único que tenemos que hacer es coger con la micropipeta 100 microlitros de la muestra de sangre y depositarla en un tubo de ensayo.

 Después, con otra punta de micropipeta cogemos 900 microlitros de líquido diluyente (en este caso Turck) y lo depositamos también el tubo de ensayo.

Por último, mezclamos.

Objetivos de la práctica:

-Saber cuál es el líquido de dilución utilizado en el recuento de leucocitos (WBC).


-Decir para qué sirve el violeta de genciana que contiene el líquido de dilución.


-Especificar el objetivo con el que se pueden contar los leucocitos.


-Si la sangre se diluye a 1/10 y se cuentan 100 leucocitos en 2 cuadrados grandes periféricos, ¿cuál es el recuento de leucocitos (WBC) obtenido?


Procedimiento:

1. Poner sobre el retículo de la cámara de Neubauer un cubreobjetos, para ello, lo humedecemos previamente con un poco de agua del frasco lavador y lo colocamos primero por uno de los extremos, para evitar la formación de burbujas de aire.


2. Aspirar la sangre con la pipeta de Thoma conectada  el tubo de goma y éste a su vez conectado a la prepipeta.


3. Debemos llegar hasta la señal de 1 y limpiar con cuidado la punta de la pipeta de Thoma con una gasa.


4. A continuación, aspirar el líquido diluyente hasta la señal de 101.


5. Desenganchar el tubo de goma de la pipeta de Thoma y homogeneizar el contenido del bulbo, para ello, sujetar la pipeta por los extremos con los dedos pulgar e índice y agitar suavemente.


6. Desechar las 3 primeras gotas. Éstas corresponden al líquido presente  en el tubo capilar largo de la pipeta de Thoma, que no está mezclado con la sangre.


7. Depositar la siguiente gota entra la cámara de recuento de Neubauer y el cubre. Esto se realiza poniéndola en uno de los bordes no adheridos del cubre y dejándola que penetre por capilaridad.



















8. Dejar reposar la sangre y observar al microscopio con el objetivo de 10 x primero y con el objetivo de 40 x después.


9. Por último hay que contar los leucocitos presentes en los 4 cuadrados grandes de las esquinas del retículo.
 Para ahorrarnos tiempo también se pueden contar 2 y multiplicar x2 el resultado.


















Cálculo de resultados:

Se cuentan los leucocitos presentes en los 4 cuadrados grandes periféricos y hay que dividir entre 4 la cifra obtenida en el recuento, para calcular el número de leucocitos que hay en un cuadrado grande.


La longitud de cada uno de los lados de los cuadrados grandes es de 1 mm , y la longitud del espacio comprendido entre éstos y el cubre es de 0,1 mm; hay que multiplicar por 10 el resultado anterior, para determinar el número de leucocitos en 1 mm cúbico y no en 0,1 mm cúbicos.


Como la sangre antes del recuento se diluye, hay que multiplicar el resultado por 10, si hemos enrasado la pipeta de Thoma hasta 1, o por 20, si se ha enrasado hasta 0,5.


Debemos emplear la siguiente fórmula:


WBC = L / 4 x 10 x D



WBC = Recuento de leucocitos por mm cúbico de sangre.

L = Número de leucocitos contados en 4 cuadros grandes.

D = Factor de dilución.



WBC = 420 / 4 x 10 x 10 = 10.500 leucocitos / mm cúbico de sangre.



Resultados obtenidos:

-Leucocitos contados en los 4 cuadrados grandes periféricos:

En total en los 4 cuadros grandes periféricos hay 420 leucocitos.

-Factor de dilución:

Es 10 , porque la sangre la hemos enrasado hasta 1 en la pipeta de Thoma.

-WBC:

El recuento de leucocitos (WBC) es de 10.500 leucocitos/ mm cúbico de sangre.


Interpretación de los resultados:

Se considera normal un recuento de leucocitos (WBC) comprendido entre 5.000 y 11.000 leucocitos / mm cúbico de sangre.

Por debajo del valor normal se considera leucopenia y por encima del valor normal se considera leucocitosis.


Valoración de los resultados:

El recuento de leucocitos (WBC) obtenido es:

-Normal.


Resolución de los objetivos propuestos:


-El líquido de dilución utilizado en el recuento de leucocitos (WBC)    es el de Turck.


-El violeta de genciana que contiene el líquido de dilución sirve para teñir el núcleo de los leucocitos, para que éstos puedan observarse mejor.


-Los leucocitos se pueden contar con el objetivo de 10 x.


-Si la sangre se diluye a 1/10 y se cuentan 100 leucocitos en 2 cuadrados grandes periféricos, ¿cuál es el recuento de leucocitos (WBC) obtenido?


WBC = 100/2 x 10 x 10 = 5.000 leucocitos / mm cúbico de sangre.
Se considera un valor normal.


Bibliografía:

- www.materialeslabo.blogspot.com

- www.biologhthem.blogspot.com

martes, 13 de enero de 2015

Práctica: Recuento de plaquetas en frotis sanguíneos.

Fecha: 9/01/2015


Información sobre la práctica:

El recuento de plaqutas (PLT o PLQ) consiste en determinar el número de trombocitos presente en un volumen de sangre determinado.


El recuento de plaquetas puede realizarse de forma aproximada contando los trombocitos presentes en varios campos de un frotis sanguíneo observado al microscópio. Sin embargo, también se puede hacer un recuento de plaquetas más exacto mediante el empleo de una cámara de recuento (Es una práctica que veremos más adelante).


El recuento de plaquetas mediante el examen de un frotis sanguíneo permite, además, el estudio de la morfología de éstos.


Las plaquetas son los pequeños puntos violetas.
















Material necesario:

-Papel de filtro.

-Papel.

-Bolígrafo.

-Microscópio.

-Cristalizador.

-Frasco lavador.


Reactivos:

-Aceite de inmersión.


Muestra utilizada:

Frotis de sangre venosa anticoagulada con EDTA o frotis de sangre capilar obtenida con un capilar heparinizado.

Una vez realizado el frotis debemos teñirlo con un método de tinción tradicional, por ejemplo: el Panóptico rápido.


Objetivos de la práctica:

-Decir cuántas plaquetas por campo microscópico hay, en condiciones normales,  en una zona de un frotis sanguíneo ,donde los eritrocitos no están superpuestos.


Procedimiento:

1. Realizar una extensión sanguínea y después utilizar una tinción hematológica tradicional para teñir la muestra.

 Nosotros preferimos utilizar el  Panóptico rápido (Este método lo hemos realizado en varias prácticas anteriores e incluso hay una práctica específica de esta tinción).


Se deja secar la extensión.














Sumergimos 5 veces en cada duquesita.




Quitamos el exceso con agua destilada.











Dejamos secar.









2. No ponemos cubre al portaobjetos y añadimos una gota de aceite de inmersión para observar la muestra al microscopio óptico.


3. Contar el número de plaquetas presentes en 10 campos microscópicos.


4. Calcular la media del número de plaquetas contadas en los 10 campos microscópicos.



Cálculos:

Para cuantificar de forma aproximada el número de trombocitos comprendidos en 1 mm cúbico de sangre, se aplica la siguiente fórmula:

PLT / mm cúbico = PLT / C x 20.000


PLT / mm cúbico = Número de plaquetas por mm cúbico de sangre.

PLT / C = Media del número de plaquetas contadas en varios campos microscópicos (en este caso, en 10 campos microscópicos)


20.000 = Es el número de campos que equivaldrían a 1 mm cúbico de sangre.

PLT / mm cúbico = (7 + 8 + 11 + 6 + 12 + 10 + 8 + 15 + 7 + 9) / 10 x 20.000 = ( 93 / 10 ) x 20.000 = 9,3 x 20.000 = 186.000 trombocitos.



Resultados obtenidos:

-Número de plaquetas contadas en 10 campos microscópicos:

En total 93 plaquetas.

-Media del número de plaquetas contadas en 10 campos microscópicos (PLT / C):

La media de plaquetas es 9,3 porque hay 93 plaquetas en 10 campos microscópicos.

-Número de plaquetas por mm cúbico de sangre (PLT /mm cúbico):

Hay 186.000 plaquetas por mm cúbico de sangre.



Interpretación clínica de los resultados:

Cuando se observa un frotis sanguíneo con el objetivo de inmersión, en condiciones normales, debe haber de 5 a 25 trombocitos por campo.

El valor normal de plaquetas está comprendido entre 130.000 y 400.000 plaquetas / mm cúbico de sangre.


Cuando el número de plaquetas por mm cúbico de sangre es inferior a 130.000, se dice que hay una trombocitopenia o trombopenia, y , cuando es superior a 400.000, se dice que hay una trombocitosis.


En nuestro caso hemos encontrado 186.000 plaquetas, por lo tanto, se encuentra entre los valores normales.



Valoración de los resultados:

El PLT / mm cúbico obtenido implica que el sujeto tiene:

Un número de plaquetas normal.



Resolución de los objetivos propuestos:

-En condiciones normales hay de 5 a 25 plaquetas por campo microscópico.


Bibliografía:

- www.materialabo.blogspot.com

lunes, 12 de enero de 2015

Práctica: Determinación del índice de lobularidad (IL)

Fecha: 8/01/2015


Información sobre la práctica:


Conociendo el número de neutrófilos de cada tipo de Arneth que hay en la sangre periférica, se puede calcular el número de lóbulos  que tiene una determinada cantidad de neutrófilos, y por tanto, es posible saber el número de lóbulos por neutrófilo.


Los autoanalizadores hematológicos modernos proporcionan esta cifra, que es conocida como índice de lobularidad (IL).


Clasificación de los neutrófilos según Arneth:



Fotografía: Libro de Hematología (pág 214)
















Material necesario:


-Un papel.

-Un bolígrafo.

-Un microscopio óptico.

-Papel de filtro.

-2 portaobjetos.

-Pipeta Pasteur.

-Gradilla.


Reactivos utilizados:


-Aceite de inmersión.


Muestra:


Extensión sanguínea de sangre venosa anticoagulada o sangre capilar fresca.


Objetivos de la práctica:


-Saber cuántos tipos de neutrófilos hay según Arneth.


-Decir qué tipo de desviación hay si el IL es igual a 2,5.


-Decir de qué enfermedades es típica la desviación a la izquierda con neutrofilia.


Procedimiento de la práctica:


1. Realizar una extensión sanguínea, dejar secar y teñir con una tinción hematológica, por ejemplo con el Panóptico rápido, es la tinción más rápida.




    
Solución nº 1


Solución nº 2















    
Solución nº 3
























-Solución nº 1: Solución alcohólica de triarilmetano.
-Solución nº 2: Solución tamponada de xanteno.
-Solución nº 3: Solución tamponada de tiazina.


Resumen:


El frotis se sumerge 5 veces en la solución nº  1, otras 5 veces en la solución nº 2 y por último otras 5 veces en la solución nº 3.



Enjuagamos con agua destilada del frasco lavador y dejamos secar.


2. Poner cubreobjetos y enfocar la extensión sanguínea con el objetivo de inmersión ( 100 x ).


3. Observar los neutrófilos y contar sus lobulaciones.


4. Clasificar los neutrófilos según Arneth a la vez que se cuentan los lóbulos de cada neutrófilo observado.


-Tipo I: neutrófilos con un núcleo no segmentado, es decir, sin lobulaciones.


 Observamos 5 neutrófilos.









-Tipo II: neutrófilos con un núcleo dividido una vez, es decir, con 2 lóbulos.


 Observamos 18 neutrófilos.















-Tipo III: neutrófilos con un núcleo dividido 2 veces, es decir, con 3 lóbulos.


Observamos 5 neutrófilos.













-Tipo IV: neutrófilos con un núcleo dividido 3 veces, es decir, con 4 lóbulos.


Observamos 3 neutrófilos.



El neutrófilo de en medio es el de tipoIV










-Tipo V: neutrófilos con un núcleo dividido 4 veces, es decir, con 5 lóbulos.


No observamos ninguno de este tipo.


5. Terminar el recuento de neutrófilos cuando se hayan observado al menos 30 neutrófilos.



Lectura de resultados:


Una vez clasificados los neutrófilos, se cuantifican las lobulaciones presentes en ellos y, seguidamente, se calcula el IL mediante la siguiente fórmula:


IL= NL / NN


IL= Índice de lobularidad.
NL= Número de lóbulos contados.
NN= Número de neutrófilos observados.


Cálculos:


IL= 68 / 30 = 2,2666666667


NL= (5 neutrófilos con 1 lobulación) + (18 neutrófilos con 2 lobulaciones) + (5 neutrófilos con 3 lobulaciones) + (3 neutrófilos con 4  lobulaciones) + (5 neutrófilos con 0 lobulaciones) = (5 x 1) + (18 x 2) + (5 x 3) + (3 x 4) + (5 x 0) = 5 + 36 + 15 + 12 + 0 = 68 lóbulos en total.


NN= 30 neutrófilos observados en total.


Resultados:


Hemos obtenido un índice de lobularidad (IL) de 2,2666666667.


Valoración de los resultados:


El IL normal está comprendido entre 1,9 y 3.


Si el IL es menor que 1,9, se dice que hay una desviación a la izquierda, y si es mayor que 3, se dice que hay una desviación a la derecha.


La desviación a la iquierda puede acompañarse de neutrofilia o de neutropenia.


La desviación a la izquierda con neutrofilia es típica de muchas infecciones agudas ( por ejemplo, apendicitis ).


La desviación a la izquierda con neutropenia es característica de otras infecciones ( por ejemplo, brucelosis : Enfermedad infecciosa producida por bacterias del género Brucella y transmitida al hombre por los animales domésticos ).


La desviación a la derecha puede darse en varios procesos patológicos, por ejemplo, en las anemias megaloblásticas.


En nuestro caso el IL es normal porque está comprendido entre 1,9 y 3.


En la sangre estudiada:


No hay ningún tipo de desviación.


Resolución de los objetivos propuestos:


-Según Arneth hay 5 tipos de neutrófilos.


-Si el IL es igual a 2,5 no hay ningún tipo de desviación.


-La desviación a la izquierda con neutrofilia es típica de la apendicitis y la sepsis: Afección generalizada producida por la presencia en la sangre de microorganismos patógenos o de sus toxinas.


Bibliografía:


- www.amunevar.wix.com

- www. aventuravoluntaria.blogspot.com

- www. biohematolog.blogspot.com

- Definiciones: Diccionario de la Real Academia Española.











Práctica: Estudio de un concentrado de leucocitos.

Fecha: 8/01/2015


Información sobre la práctica:


En determinados casos está indicada la obtención de un concentrado de leucocitos ( o también llamados glóbulos blancos ). 


Esos casos son los siguientes:


-Para obtener y estudiar microscópicamente células patológicas en una leucopenia ( número de leucocitos en la sangre inferior al normal ).


-Obtener células en una leucopenia para la realización de pruebas citoquímicas ( son pruebas que estudian la composición química de las células y sus procesos biológicos moleculares mediante análisis químicos y quimico-físicos que permitan su observación ).



-Obtener células para la búsqueda del corpúsculo de Barr. Éste es la condensación del material genético inactivado de un cromosoma X.



Materiales empleados:

-Papel de filtro.

-Una centrífuga.

-Tubo de centrífuga.

-Tubos de anticoagulante ( citrato sódico ).

-Pipeta Pasteur de vidrio.

-2 Portaobjetos.

-Micropipeta.

-Puntas de micropipeta.

-Frasco lavador.

-Cristalizador.

-Aceite de inmersión.

-Microscopio óptico.


Reactivos:

-Agua destilada.

En este caso yo utilicé la tinción Panóptico rápido.

-Solución nº 1: Solución alcohólica de triarilmetano.
-Solución nº 2: Solución tamponada de xanteno.
-Solución nº 3: Solución tamponada de tiazina.















Resumen:

El frotis se sumerge 5 veces en la solución nº  1, otras 5 veces en la solución nº 2 y por último otras 5 veces en la solución nº 3 .

Enjuagamos con agua destilada del frasco lavador y dejamos secar.


Muestra utilizada:

Sangre venosa anticoagulada con citrato sódico. La proporción que hay que utilizar de anticoagulante es de 0,5 ml de citrato sódico al 3,2 % por cada 4,5 ml de sangre venosa.

Objetivos de la práctica:

-Saber cómo se llama a la condensación del material genético inactivado de un cromosoma X.

-Decir el otro nombre que recibe la capa leucoplaquetaria.

-Al centrifugar la sangre, decir en qué capa se sitúan los hematíes.

Desarrollo:

1.La sangre venosa se deposita en tubos con un anticoagulante llamado citrato sódico.

2.Centrifugamos la sangre anticoagulada a 3.500 r.p.m durante 10 minutos.












3.Retiramos  el sobrenadante obtenido ( el plasma) con una micropipeta.
















4.Poniéndole a la micropipeta otra punta desechable, recogemos 0,2 ml ( 200 microlitros ) de la capa leucoplaquetaria ( o buffy coat ).

















5. Realizamos un frotis con una gota de la capa leucoplaquetaria o buffy coat sobre un portaobjetos.


6. Una vez seco el frotis, hay que teñir mediante una técnica hematológica tradicional ( Giemsa, Wright, Panóptico rápido, etc ).Para nosotros la mejor opción es el Panóptico rápido porque apenas se tardan 15 segundos en realizarla.

Lectura de resultados:

Al observar al microscopio el frotis de la buffy coat observamos numerosos tipos de leucocitos y múltiples plaquetas, la observamos con el objetivo de inmersión.

Resolución de los objetivos propuestos:

-La condensación del material genético inactivado de un cromosoma X se llama corpúsculo de Barr.

-La capa leucoplaquetaria puede llamarse también buffy coat.

-Al centrifugar la sangre los hematíes se sitúan en la capa inferior.

Valoración de los resultados:

En la sangre estudiada:

No hay leucocitos con alteraciones.

Bibliografía:

- www.biotecnologiaquimicasena.blogspot.com

- www.lymerick.net

- www.biologiahematolog.blogspot.com